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資料與方法

樣本來源:健康人及臨床患者新鮮抗凝全血(EDTA-K2,抗凝真空負壓采血管采集)。

方法:儀器校準:用校準參考儀器MEK7222-K型血細胞分析儀之進口原裝配套校準品對其進行校準,再在該儀器上將健康人新鮮抗凝全血連續測定11次,棄去第1次結果,計算其余10次各指標之均值作為新鮮血參考定值。用此定值新鮮血代替校準品對BC-5500及ABX-60兩臺血細胞分析儀進行校準(樣本采集到校準完成4小時內結束)。

比對試驗:選取臨床患者高、中、低值5份新鮮抗凝全血在上述校準后的各臺儀器上與其他樣本一同測定(測平行樣取均值)。以MEK7222-K型血細胞分析儀所測結果為標準,分別計算BC-5500及ABX-60兩臺血細胞分析儀所測結果之偏差(CV%)。

結 果

用新鮮血校準的BC-5500、ABX-60兩臺血細胞分析儀之檢測結果與校準參考儀器MEK7222-K分析儀之檢測結果配對比較t檢驗,均為P>0.05,表明差別無顯著性意義;RDW最大CV值為3.8%,PLT最大CV值為6.9%,MPV最大CV值為14.6%,其余各項指標CV值均

討 論

血細胞分析是臨床最常用的實驗室檢測指標,其結果的準確與否直接影響到多種疾病的診療。全自動血細胞分析儀由于計數準確,精密度高,操作簡便、快速,因而發展迅速,已逐漸取代傳統手工方法,成為臨床實驗室的主要檢測手段。但由于生產血細胞分析儀的廠家多,各自使用的測定原理和方法不盡相同,導致其測定結果及參考范圍有所差異。國內各醫院使用不同廠家和型號的血細胞分析儀已成為普遍現象,致使分析結果呈現不同程度的差異,給臨床跟蹤觀察與對比帶來困難[1]。

血細胞分析結果只有直接或間接地溯源至參考方法,才能保證檢測結果的正確性和不同儀器間結果的可比性[2]。血細胞分析儀校準品是權威部門認可的標準物質,只能用于與之配套的同一品牌型號的儀器,由于其價格昂貴、有效期短、進口入關手續復雜而不能及時獲得等問題,使其難以在實驗室推廣。

所謂自動血細胞分析儀實際上就是一臺比較器,它將實測數據與校準數據進行比較,繼而得出檢測標本的分析結果。由此可見,校準物在儀器測定結果的準確是否上起到決定性作用[3]。最好的校準品是經ICSH推薦的參考方法定值的新鮮人體血液:①氰化高鐵血紅蛋白法測定血紅蛋白(HGB)。②微量紅細胞壓積法測定紅細胞比容(HCT)。微量計數板手工計數RBC和WBC。③相差顯微鏡計數血小板,該新鮮血適用于各種型號儀器的校準。有報道可購買一臺性能最佳血細胞分析儀之配套校準品校準該儀器,再以該儀器作為校準參考儀器取得新鮮血各項參數用于其他多臺儀器的校準[4]。上述比對結果顯示:用新鮮血校準的BC-5500及ABX-60兩臺血細胞分析儀與校準參考儀器MEK7222-K分析儀各參數間進行配對資料t檢驗,均為P>0.05,表明差別無顯著性意義;五項基礎指標之CV值均小于衛生部臨檢中心允許的可接受范圍:尤以WBC、RBC、HGB、HCT四項指標的符合性最好。因EDTA-K 2抗凝血中,血小板體積不穩定,隨時間延長而增大,可能是導致PLT、MPV偏差較大的主要原因[5]。

實驗結果證明,用配套校準品校準一臺性能最佳血細胞分析儀,再用新鮮血在該儀器上取得參數后去校準其他多臺分析儀可取得滿意結果,該方法既簡便易行又經濟實用。

參考文獻

1 彭明婷,谷小林,等.不同方法校準血液分析儀結果比較.中華檢驗醫學雜志,2000,23(1):35-37.

2 葉應嫵,王毓三,申子瑜,等.全國臨床檢驗操作規程.南京:東南出版社,2006:47-81.

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1.1 儀器:采用的儀器是日本Sysmex公司生產的KX-21型全自動血細胞分析儀。

1.2 試劑 ① 儀器用的稀釋液、清洗液、溶血劑均由日本Sysmex公司提供。② 顯微鏡計數用的血小板稀釋液按《全國臨床檢驗操作規程》（第二版）配制，冰箱保存。 ③EDTA-K2抗凝劑

1.3 標本來源 選自2008年1月-2008年12月本院門診及住院的血小板結果異常的血標本共207例，另挑選血小板結果正常的血100作對照。

1.4 用EDTA-K2抗凝全血2ml，充分混勻后，2小時內KX-21型全自動血細胞分析儀檢測，取血小板檢測結果異常的血標本，同時用顯微鏡手工計數，另取血小板檢測結果正常的血標本100例同時用顯微鏡手工計數，比較兩法結果。

2 結果

血小板少于100×109／L的血標本121例，為A組；血小板大于300×109／L的血標本86例，為B組；lind板在100~300×109／L的血標本100例，為C組，其兩法測定結果如表1所示。

3 討論

3.1 在Sysmex X-21型全自動血細胞分析儀檢測中，由于紅細胞和血小板的計數是在同一通道中進行，且它們之間僅以體積大小來區別，因此，血小板的計數易受小紅細胞數量或紅細胞碎片的影響，由于血液中小紅細胞的數量遠大于血小板數量，即使有少量的小紅細胞混入血小板計數范圍內，也會對血小板計數造成很大的影響。在血小板直方圖右側下降后繼而抬高呈駝峰樣改變，血片油鏡檢查顯示紅細胞較小或紅細胞碎片較多，兩種方法血小板計數結果比較，差異有統計學意義（P＜0.01）.

3.2 由于血小板的特點易于粘附、聚集。李永紅等認為采血是否順利是造成血小板偏低的的一個重要原因。采血過程中因操作緩慢，穿刺不順且組織受損后，組織凝血因子易混入血標本，混勻不及時等均可促成血小板聚集，從而產生肉眼看不見的小凝塊，這是血細胞分析儀測定血小板結果偏低的常見原因之一。這時血片鏡檢可見血小板聚集成堆。遇到這種情況應重新采血測定。

3.3 某些血液病可造成血小板數真正減少，如骨髓巨核細胞生成不良（如障）；血小板破壞增加（如DIC、IPT）;血小板分布異常（如脾大）等。

3.4 標本放置時間過長、試劑質量、地線、電源和藥物等因素均能對血小板的計數造成一定程度的影響，因此檢測過程中應盡可能排除各種因素的干擾，以使血小板計數可靠，為臨床診斷治療提供有參考意義的數據。

參考文獻

［1］ 趙紅燕.血液細胞儀測定血小板計數結果的分析.上海醫學檢驗雜志，1998.1.3（2）：27

［2］ 陳夢珍。血細胞分析儀測定血小板影響因素的探討。江西醫學學報，2005,23（3）:243-244

［3］ 詹靈凌，秦雪、林發全等。血細胞分析儀計數血小板的影響因素分析與糾正，廣西醫科大學學報，2004.21（5）:763-764。

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我院現有兩臺血細胞分析儀，它們分別在門診檢驗室及住院部檢驗室，為了防止在實際臨床的測定中對校準物的定值、儀器校準和儀器使用中的漂移等各種因素導致同一患者的血液先后在不同儀器測定結果存在差異，所以特別對我院兩臺血細胞分析儀進行比對。

1 資料及方法

1.1 一般資料:這兩臺血細胞分析儀均為CELLDYN 1700全自動血細胞分析儀及統一使用原廠配套試劑，以住院部檢驗室使用的CELLDYN 1700全自動血細胞分析儀為比對儀器，門診血液室使用的CELLDYN 1700全自動血細胞分析儀為試驗儀器與其進行比對。

1.2 方法:通過重復性的試驗用患者新鮮血液標本分別在兩臺儀器進行連續性的測定10次，來計算其精密度；比對試驗每日隨機選取8份新鮮血，先后用兩臺儀器測定WBC、RBC、HB、HCT、PLT 5項參數，其中每份測定兩次，取其平均值，連續測定7 d［1］；試驗儀器(X)測定范圍的檢驗：X的分布范圍是否合適，可用相關系數(r)進行估計，r≥0.975則為范圍合適，直線回歸統計的斜率和截距可靠；重復試驗評價。

1.3 統計學方法:通過SPSS 10.0進行計算得出其相關系數、回歸方程及CV值。

2 結果

2.1 比對儀器各測定項目重復性試驗結果均符合要求。試驗儀器重復性試驗結果只有PLT結果達到要求，其余項目均超出要求。結果見表1。

2.2 各檢驗數據可靠，r均＞0.975。兩臺儀器的相關性見表2。

3 討論

通過試驗，我們認為如果有使用兩臺或兩臺以上同一型號的儀器時，即使統一使用配套試劑，但在日常工作中可能操作及保養情況存在差異，往往也會導致檢驗結果出現偏差。根據目前，同一檢驗科使用兩臺或兩臺以上的血細胞計數儀相當普遍，通過 ISO 15189臨床實驗室質量保證之內審要求在同一實驗室使用2種以上型號的血液分析儀時，應當進行必要的性能校準，建立不同實驗室間的比對制度。兩臺儀器在所檢測的各個項目的各個濃度對比過程中，均存在較好的相關性，預期偏倚均在可接受的范圍內［2］。通過試驗發現，試驗儀器重復性較差，只有PLT檢測結果符合要求，且比對試驗中PLT項目不接受，與比對儀器檢測結果存在一定的偏差。所以在使用兩臺或兩臺以上不同型號的血細胞計數儀時，都普遍認為因儀器檢測系統的不一致性，不同型號儀器應該定期進行比對試驗，以保證相互檢驗結果的可比性［3，4］。所以，在使用兩臺或兩臺以上同型號血細胞分析儀時，除使用統一的配套試劑，在對儀器進行定標、校準、保養及維護的時間應同時進行，操作人員也應統一培訓，保證操作的正確性，同時應建立比對制度，定期對使用儀器進行比對，確保檢驗結果的可比性。

參考文獻

[1] 叢玉隆.現代血細胞分析技術與臨床［M］.北京：人民軍醫出版社，2005：96-118

［2］ 馮仁豐．臨床檢驗管理技術基礎［M］．上海：上海科學文獻出版社，2003：5-8

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血細胞分析是臨床最常用的實驗室檢測指標,其結果的準確與否直接影響到多種疾病的診療。全自動血細胞分析儀由于計數準確,精密度高,操作簡便、快速,因而發展迅速,已逐漸取代傳統手工方法,成為臨床實驗室的主要檢測手段。但由于生產血細胞分析儀的廠家多,各自使用的測定原理和方法不盡相同,導致其測定結果及參考范圍有所差異。各醫院使用不同廠家和型號的血細胞分析儀已成為普遍現象,致使分析結果呈現不同程度的差異,給臨床跟蹤觀察與對比帶來困難[1]。

根據《醫療機構臨床實驗室管理辦法》的規定,掌握本室內機臺血細胞分析儀結果的可比性和可靠性,保證本室內檢測結果的一致性。本文對本室內的兩臺(貝克曼庫爾特 HL-750和SysmexXH-2100)不同廠家.不同型號的血細胞分析儀的結果進行了比對,兩臺血細胞分析儀性能穩定,使用配套的校準品.質控品和試。每日有室內質控血球檢測,對兩臺血細胞分析儀測定的WBC.RBC.Hb.HCT.PLT結果進行比對試驗,結果報道如下:

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 儀器:血細胞分析儀兩臺,分別是貝克曼庫爾特公司的HL-750血細胞分析儀和Sysmex公司的XH-2100血細胞分析儀。

1.1.2 主要試劑:HL-750血細胞分析儀試劑.校準品.質控品由美國貝克曼庫爾特公司提供;XH-2100血細胞分析儀試劑.校準品.質控品由希思美康公司提供的Sysmex產品。

1.1.3 標本:臨床患者新鮮靜脈抗凝血。抗凝劑為EDTA-k2,采血管為奧地利格雷娜公司的真空采血管。

1.2 方法

1.2.1 室內質控:各臺血細胞分析儀每天用全血質控物測定,其中包括WBC、RBC、Hb、HCT、PLT、MCV結果為室內質控項目,結果在控制允許范圍內。

1.2.2 比對實驗:采取患者新鮮靜脈血標本,每日選取10例,其中包括高.中.低值血細胞標本,分別進行WBC、RBC、Hb、HCT、PLT、MCV檢測,重復測定2次,取平均值,供測定5天,實驗在2小時內完成。

1.2.3 數據處理:各種數據使用MicrosoftExcel 工具中函數計算;方法:在Excel 方格中分別輸入兩臺血細胞分析儀的WBC、RBC、Hb、HCT、PLT、MCV 數據,計算兩組數據的CV值,相關系數.回歸方程。

2 結果

2.1 2臺血細胞分析儀每日室內質控,共計測定30天,CV值見表1。

3 討論

血細胞分析儀因為計數結果準確、精度高,操作簡便、快速,因而發展迅速,成為臨床實驗室地主要檢測手段。在國內大中型醫院,同一實驗室使用不同廠家和型號的血細胞計數儀已成為較普遍現象,即使各儀器配套質控物都在允許范圍內,也會出現同一標本用不同地儀器分析,出現測定值的差異,給評估和解釋結果帶來一定困難,并不時地給疾病地診斷、治療及預后帶來誤解和不良地影響,又增加了經濟成本[2]。

通過新鮮全血對2臺儀器測定結果比對表明:2臺儀器地相關性較好,尤其WBC、RBC、HGB、3個項目結果相關密切(r均>0.975),結果間沒有明顯差異,PLT結果相關性也很好,NCCLS推薦地多臺血細胞分析儀計數PLT地CV值可為25%。其中C-5d,C-2d和CD-1700,3臺儀器相關性好,BC-3000略差一些。結果間地比對是了解儀器之間測定結果地可比性和可靠性,保證實驗室內結果地一致性。以上結果表明:4臺血細胞分析儀具有很好地可比性,可用新鮮全血替代配套質控物每天對4臺血細胞分析儀進行質控。

各臺血液分析儀各項檢測指標的結果穩定、精密度好,CV值均

參考文獻

[1] 彭明婷,谷小林,等.不同方法校準血液分析儀結果比較.中華檢驗醫學雜志,2000,23(1):35-37

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1.1儀器

深圳邁瑞公司生產的BC-5500血液分析儀。

1.2試劑

BC-5500專用配套試劑（溶血劑、稀釋液、清洗液）。

1.3其他

校準物與質控液，全血校準液（由深圳邁瑞公司提供），全血質控物（由青海省臨檢中心提供）。

1.4方法

1.4.1按儀器維護保養要求，對儀器進行全面的維護，經常保持微孔的清潔，以保證BC-500在正常條件下批內重復測定變異數（RCV）在規定范圍內，每次實驗前血液分析儀用全血校準物校準儀器后，嚴格按儀器操作步驟進行測試。

1.4.2用含EDTA-K抗凝管，采集120例健康人靜脈血2ml，輕輕混勻后，立即在血液分析儀BC-500上測定3次，然后分別于5、10、20、30、60min各測3次，并用全血質控物質同步監測儀器，分別計算其均值，按時間分組，分別利用多樣本均數間顯著性檢驗與配對t檢驗進行統計學分析。

2.結果

2.1標本自身因素的影響

由于采血過程不順利，過分擠壓或未充分與抗凝劑混勻等因素人為造成血小板的凝集，是造成血小板計數不準確的首要原因。

2.2標本放置時間的影響

WBC在采血后0―30min內隨時間延長其數量不規則遞減，組與組之間差異有顯著性（P

2.3血小板聚集分可逆聚集和不可逆聚集

當新鮮靜脈血加入EDTA―K2：抗凝瓶混勻后血小板即發生聚集反應，此時立即進行全血細胞測定，可逆聚集的血小板還沒有解聚，會造成全血細胞分析結果誤差。白細胞不同程度假性升高，直方圖的小細胞群會出現一個很高的截距，血小板不同程度的假性降低，直方圖就會出現鋸齒波或尾部抬高。但抗凝血靜置30min后，再進行測定，即可消除上述假性結果。100例靜脈血放置不同時間各參數的均值比較可看出60min與30min測定值差異無顯著性（P>0.05），30min與20min測定值差異有顯著性（P

3.討論

BC-5500型血細胞分析儀計數血小板的原理是直接計數2―20fl范圍內的血小板，根據正態分布理論，用電子擬合線擬合0―70fl范圍內的血小板數量作最終報告結果，具有雙曲線的血小板直方圖是它的標準結果，只具有單曲線的血小板直方圖，只要成正態對數分布，曲線在20fl范圍內有明顯的主峰，其儀器計數法與顯微鏡計數法較一致，與臨床基本吻合[1]。血小板膜分內膜和外膜，外膜圍繞胞質形成漿膜，并延伸到胞質內部并折疊形成開放微小管系統，它是血小板攝取和釋放的通道。質膜內側附著許多微絲，其主要成分為肌動蛋白的肌凝蛋白，與微管環周束共同支持偽足的形成。當新鮮靜脈血離體加入EDTA―K抗凝瓶內，管壁周圍的全血外環境及溫度發生改變，使血小板形態發生變化[2]。由于血小板發生聚集，在阻抗法做血小板計數時，聚集體所產生的脈沖大于儀器預設的單一血小板脈沖值，因而就不會計數血小板結果內，從而使血小板數量減少。

故血小板聚集的原因可能有：

（1）抗凝劑EDTA―K2：能使血小板形態發生改變。由盤狀變成球狀，從而使可逆聚集血小板的偽足回縮到血小板胞質內，血小板相互纏繞的偽足就可解除。

（2）可逆聚集的血小板由于形態有所改變及偽足的形成，增大了血小板表面積，其表面負電荷相應增大，同性電荷的排斥力也就相應增強。

（3）溫度升高，分子運動速度越快，溫度對可逆聚集血小板解聚的影響尤其在用預稀釋方法作全血細胞測定中更為明顯。

（4）溶血劑的加入量、溶血時間和儀器檢測的清潔度有關，因此必須保持微孔的清潔，才能保證儀器測定的可靠性。原因：經EDTA―K2抗凝的全血標本，在采血30min后進行全血細胞分析，可提高結果的準確性。但需排除化療、血小板減少性紫癜、白血病及造血系統異常等疾病。血小板形態不規則且細小，任何灰塵和斑點都會影響計數。反復使用的測定管極易引起雜質吸附，造成殘余溶血素污染，從而引起PLT計數偏高。血細胞分析儀檢測血小板的準確性取決于很多因素，環境、溫度、抗凝劑混合情況以及所有影響電脈沖大小及數目的因素都會影響正確計數。因此，只有正確操作，排除各種干擾，才能使血小板的計數結果準確靠。

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資料與方法

試劑和儀器：XT-1800i血細胞分析儀及其專用試劑，Olympus光學顯微鏡。

標本：靜脈血2ml（EDTA-K2抗凝），均來自我院門診健康體檢。

結 果

檢測前先做本底測定和質控，在允許范圍內后，才能進行測試。

統計方法：用EXCEL對數據進行統計分析，用函數CORREL計算相關系數，差異用t檢驗。

精密度測定：批內精密度檢測：選擇高、中、低值3份標本，每份連續測定11次，第1次結果不用，統計后10次結果，計算各項目（WBC、RBC、HGB、PLT、HCT）的變異系數CV。批間精密度檢測：中值質控品連續測定20天，然后計算上述各項目的變異系數CV，見表1和表2。

攜帶污染率檢測：選取高、低值的WBC、RBC、PLT、HGB標本先連續測定高值標本3次（H1、H2、H3），再連續測定低值標本3次（L1、L2、L3），依據公式：攜帶污染率（%）=[（L1-L3）/（H3-L3）]×100，計算出各項目的污染率，見表3。

線性測定：參照NCCLS文件規定線性測定方法，隨機選取高值全血標本，用生理鹽水作倍比稀釋10%、20%、40%、60%、80%、100%，然后在XT-1800i上進行測定，每份標本連續測量5次[1]，將均值計為測量值，然后將測量結果與各稀釋濃度理論值作對比，分別并計算出各項目相關系數，見表4。

白細胞分類結果準確度檢測：隨機取100份標本，分別制備2張血片，由兩名經驗豐富的技師按照《全國臨床檢驗操作規程》采用雙盲法進行染色細胞分類[2]。每張血片計數200個白細胞（NE：中性粒細胞，LY：淋巴細胞，MO：單核細胞，EO：嗜酸性粒細胞，BA：嗜堿細胞），取均值計為結果。然后與XT-1800i分析儀的測定值進行比較，見表5。

討 論

XT-1800i血細胞分析儀，其核心原理仍然是核酸熒光染色結合半導體激光以及流式細胞術。RBC/PLT檢測采用電阻法和雙鞘流檢測，降低顆粒回流、側向通過等不足。采用SLS-HGB法檢測HGB，對于WBC值偏高的標本，可以徹底溶解WBC，避免對HGB比色的干擾。專用WBC/BASO和WBC/DIFF檢測通道，提高了準確率，可以最大限度地較少幼稚細胞漏檢的可能。

綜上可知，表1顯示批內CV值小于規定值，重復性好，表2 CV0.98，相關性好。表5中兩組數據比較，P>0.05，可知XT-1800i血細胞分析儀在白細胞的分類方面與人工分類基本無差別，準確度高，但也有要注意的時候，特別是一些異常的細胞或者寄生蟲，儀器結果可能有一定偏差，因此，當細胞計數值過高或者過低，散點圖或直方圖異常，異常 表1 XT-1800i血細胞分析儀批內精密度測定結果（%）報警等的時候，必須要求手工復片，并應制定相應的復檢標準。

總之，通過檢測XT-1800i血細胞分析儀的各項指標，該機器具有檢測速度快，重復性好，攜帶污染率小，白細胞分類準確度高等優點，是一種性能優良的全自動血細胞分析儀，在實驗室大批量標本檢測時，有效地提高了效率和準確度，很好地滿足實驗室的工作要求。

篇7

由于血細胞分析儀的計數可受很多因素影響，不可能使每項參數都完全正確，所以進行血涂片鏡檢的重要作用不能忽視。使用血細胞分析儀時，應對每例患者都作血涂片鏡檢，從血涂片中細胞分布情況，可大致估計血細胞數，因而可對照血細胞分析儀計數是否正確，以保證計數質量。

1.1 對白細胞計數的復核 筆者曾遇一重癥肝炎患者，血細胞分析儀計數白細胞異常增高，而血涂片中白細胞分布正常；后經手工計數，白細胞在正常范圍，考慮可能是高膽紅素血癥干擾儀器計數所致。采用生理鹽水洗滌，再重新計數，結果正常。由于同時作血涂片的檢查，使錯誤得以及時糾正。血細胞分析儀對白細胞計數的干擾因素可有：巨大血小板、血小板凝塊、有核紅細胞、溶血素、工作溫度等，造成白細胞假性升高或降低，故用血涂片進行復核很有必要。

1.2 對白細胞分類的復核 儀器對細胞分類是基本白細胞在加入溶血素后體積變化來區分，分類比較粗糙，只是一種過篩手段，與傳統分類不同，傳統手工分類是按基本細胞形態來分類的。目前，血細胞分析儀尚不能明確區分幼稚細胞、嗜酸性或嗜堿性粒細胞和單核細胞，也不能識別異型淋巴細胞等［1］。因此，進行鏡檢分類是必不可少的，它是保證細胞分類正確的基礎。目前尚無一種自動化血細胞分析儀可以代替手工涂片。

1.3 血小板計數的復核 用血涂片進行血小板數復核，需要有豐富的經驗，仔細觀察血涂片中血小板的形態及分布，如血小板數量正常而形態不正常，可進一步作血小板功能方面的檢查。如血小板數與儀器計數有出入，可能因素有：血小板凝集、細胞碎片、纖維蛋白、小紅細胞(體積＜30 fL)、標本放置時間過長等，均可嚴重干擾血小板計數。

2 通過血涂片，并結合血細胞分析儀的各項參數及報警信號，可為臨床提供有價值的資料

2.1 根據白細胞參數及直方圖，結合血涂片檢查分析，可發現更有價值的資料 當參數的直方圖提示中性粒細胞數異常時，血涂片檢查應特別注意中性粒細胞是否有形態異常，如核左移常伴有中毒顆粒、空泡變性，是否有原始和幼稚細胞等，如中性粒細胞5葉核以上者超過3%則為核右移，為造血功能衰退或缺乏造血物質所致。當參數和直方圖提示中間細胞數異常時，血涂片檢查就應特別注意嗜酸性、嗜堿性粒細胞和單核細胞的形態變化及其所占比例，注意是否有原始或幼稚細胞。在實際工作中也可發現，白細胞總數在正常范圍內的白血病，如果不作血涂片檢查，往往易漏診。當直方圖和參數提示淋巴細胞異常時，血涂片檢查應特別注意有無異型淋巴細胞，有無原始和幼稚淋巴細胞等。

2.2 根據紅細胞參數及直方圖，結合血涂片，可為貧血的鑒別診斷提供有價值的依據，這時平均紅細胞體積(MCV)均小于正常對照值，紅細胞體積分布寬度(RDW)大于正常對照值。紅細胞大小不均，大紅細胞及巨紅細胞易見到，生理性中心淺染區常消失，可見多色性及有核紅細胞為巨幼紅細胞性貧血，MCV和RDW均高于正常對照組。鏡下見許多正色素性和低色素性紅細胞則多見于缺鐵粒幼細胞性貧血。以上各種原因的貧血均為造血原料不足或利用障礙引起。若見靶形紅細胞，RDW為正常范圍，則為地中海貧血。在溶血性貧血和再生障礙性貧血中，紅細胞形態可大致正常，若易見嗜多色性紅細胞，亦可見到有核紅細胞，且RDW大于正常對照時，可推斷為溶血性貧血；否則，可推斷為再生障礙性貧血，并觀察到粒細胞和血小板皆少。此外，鐮形紅細胞可見于血紅蛋白S病，口形紅細胞常見于遺傳性口形紅細胞增多癥；脾切除患者的紅細胞中可見多數棘細胞；在遺傳性橢圓形紅細胞增多癥的血涂片中，橢圓形紅細胞可在25%以上；紅細胞碎片或不完整的紅細胞，在彌漫性血管內凝血、微血管溶血性貧血、重型地中海貧血時出現較多。

3 血涂片鏡檢可檢查寄生蟲

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隨著科學技術的高速發展，血細胞分析儀在臨床上得到了普遍應用。其速度快、易操作、功能強為臨床提供了不同層次有效的血細胞參數，為血細胞計數的篩查方法。但由于其檢測原理的局限性，使結果易受多種因素影響，血小板結果偏高是常見的問題。SYSMEX XT-1800i血細胞分析儀應用庫爾特原理，采用電阻抗法進行細胞計數。當體積大小不等的血細胞通過儀器計數小孔時，引起小孔內、外電流和電壓的變化，形成與血細胞數量相當，體積大小相應的脈沖變化，從而間接地區分出血細胞。血小板與紅細胞計數區域常有交叉，體積偏小的紅細胞其脈沖信號可能被視為血小板信號，造成血小板計數假性增高[1]。為了解電阻抗法小紅細胞對血小板計數的影響，筆者按紅細胞平均體積的大小分類，比較電阻抗法與顯微鏡法血小板計數的差異，現將結果報告如下。

1　資料與方法

1.1　一般資料　選擇2011年5-11月本院門診及住院的180例患者。按MCV大小進行分組，第一組MCV 70~81.9 fl，第二組MCV 60~69.9 fl，第三組MCV

1.2　儀器與試劑　血細胞分析儀：采用日本SYSMEX XT1800i全自動分析儀及原裝配套試劑與質控物。手工法：雙目顯微鏡，改良牛鮑計數板，試劑為1%草酸銨稀釋液，按全國臨床檢驗技術操作規程第3版配置[2]。

1.3　檢測方法　在空腹狀態下，抽取患者靜脈血2 ml，加入含EDTA-K2抗凝劑的真空試管中，輕輕搖勻，在2 h內檢測完畢。檢測標本前，每日用儀器原裝質控物做質控，保證儀器在控的前提下檢測患者標本。儀器檢測標本的同時進行顯微鏡計數，用毛細吸管抽取20 μl靜脈血加入0.38 ml草酸銨稀釋液中，搖勻后滴入計數板，室溫靜置后，經有經驗的工作人員計數兩次取平均值。

1.4　統計學處理　采用SPSS 10.0軟件進行統計學處理，計量資料以(x±s)表示，采用t檢驗，以P

2　結果

MCV 70~81.9 fl時，儀器法與手工法比較差異無統計學意義(P>0.05)。MCV 60~69.9 fl時，儀器法與手工法比較差異有統計學意義(P

3　討論

血小板檢測是研究凝血與止血功能的重要指標之一，也是手術前必要檢查的項目。臨床上很多疾病都能引起血小板的增高，如慢性粒細胞性白血病、原發性血小板增多癥、真性紅細胞增多癥。一些疾病還可引起血小板反應性增高，如急性化膿性感染、大出血、急性溶血、腫瘤等。因此，血小板檢測結果的可靠性至關重要。

SYSMEX XT-1800i全自動血細胞分析儀采用電阻抗原理，根據顆粒的大小來區別細胞，與顆粒的性質無關。紅細胞和血小板同在一個檢測通道，儀器把2~30 fl范圍的細胞判定為血小板，而將25~250 fl范圍的細胞判定為紅細胞，因而紅細胞與血小板之間存在計數的交叉區域。當紅細胞體積正常時，與血小板體積懸殊很大，不會干擾血小板計數。紅細胞體積偏小時，儀器會將小紅細胞誤認為血小板，使血小板假性升高。而且MCV越小，對血小板計數影響越大，血小板計數假性增高就越多[3]。臨床上最常見的小細胞性貧血有缺鐵性貧血、地中海性貧血。紅細胞分布寬度(RDW)是紅細胞體積異質性參數，反應紅細胞體積大小不一致的程度。MCV 70~81.9 fl，RDW異常時，小紅細胞比例增加，血小板假性升高。當患者標本中的小紅細胞增多時，血小板相應參數PDW、P-LCR、PCT不出結果，儀器報警提示血小板分布異常，直方圖右側抬高，不與橫坐標重合甚至平行，呈拖尾狀，這是因為小紅細胞的脈沖被誤認為血小板，而體積又比血小板大的原因[4]。

綜上所述，電阻抗法檢測血小板時，容易受小紅細胞干擾。在實際操作過程中，檢驗人員應掌握儀器的原理，觀察圖形及報警，出現MCV小于70 fl或MCV在70~81.9 fl之間而RDW大于14.5%時，應及時顯微鏡復檢，減少血小板計數誤差，提高檢驗結果的準確性和可靠性。

參考文獻

[1] 胡前平.小紅細胞對血小板測定的影響[J].檢驗醫學與臨床，2006，3(9)：480.

[2] 葉應嫵，王毓三，申子瑜.全國臨床檢驗操作規程[M].第3版.南京：東南大學出版社，2006：136-137.

篇9

1.液路故障

1.1 WBC計數偏低且不分類。

故障現象： WBC 計數結果偏低 WBC/BASO 不分類。后來 WBC 計數為“0”，WBC/DIFF ，WBC/BASO 通道均不分類。兩個通道的粒子數均為“0”

故障分析和處理：首先考慮液路問題，因為就只有白細胞通道計數和分類不正常，其他通道的參數正常，所以只考慮WBC。通過觀察發現在計數的過程中有血液進入DIFF BASO 池中。說明前端沒有問題，接著考慮DIFF BASO池到流動室的這段管路。檢查流動室后的SV6 閥是否有液體流出。拔掉SV6 閥到WC2池的這段管路后有液體從SV6 閥流出，觀察SV6 閥后面的液路和WC2 廢液池非常的臟，用探頭清洗液從管路向WC2 池里面打液體把管路打通，再將流動室、樣本針對應的液路清洗。做樣本發現WBC 有計數也有分類，但是WBC 計數結果還是偏低0.3-0.5。懷疑有地方沒有洗干凈，然后進行兩遍整機探頭液浸泡，仍然無好轉。最后懷疑是SV6 閥的問題，更換SV6 閥后結果正常。

1.2 HGB故障

故障現象：做空白就報警HGB 故障。

故障分析和處理：拆開屏蔽殼觀察，發現每次在加入稀釋液后都會產生大量氣泡，這些氣泡很快會消失。分析認為，這些氣泡應該是造成HGB 本底電壓偏低的原因，因此檢查了LH 及稀釋液的加入，從試劑瓶到計數池的管路未發現異常，更換相關的閥無效。觀察HGB 池內的情況，發現每次稀釋液的加入都是一滴滴滴下去，不是一條水柱加入，發現稀釋液加入HGB 池的特氟龍管沒有在HGB 池中露出頭來，懷疑管子內的液體在池子上的接插處與其產生了干涉，造成液體不能直接加入HGB 池。將管子上的硅膠套管去掉，手動將特氟龍管末端伸出接插處，試劑加入時不再產生大量氣泡，空白正常。

1.3預混池溢液

故障現象：機器底部靠近自動進樣器右后端有液體不斷滲出來，機器在做樣本是沒有液體露出。

故障分析：液體加入過多；液體排不凈。

處理過程：發現預混池以下全部有液體，且預混池滿，判斷液體從預混池上端溢出。服務-維護中找到排空/灌注，在取消休眠的情況下排空預混池，發現廢液排出很迅速并且很干凈，排出廢液排出的問題。做樣本的時候無漏液的情況，排空液路后等待了一會，發現預混池內液面漸漸上升，大概10分鐘開始溢液，確定是預混池加液體過多。預混池的液體是從DIL 池過來的稀釋液，有2 條路徑，一條是通過預混池后端-分血閥-SV23——DIL 池，一條是通過預混池上端-分血閥-SV5-SV22—DIL池。沒有發現上端有液體滴下，極有可能是從后端漏進來的稀釋液。將SV22 與SV23 閥予以調換，預混池上端開始有滴液，證明了SV23 閥已經關閉不嚴，所以才出現此現象，更換閥門后故障消除。

2.機械故障

故障現象：自動進樣偶發掉管。

處理方法：打開前面板，取出試管夾上的試管，把試管架從自動進樣器上取出，然后消除故障，從新開始測試。偶爾有試管掉落到機器內部，需要用鑷子取出來。懷疑試管夾夾著試管在上下氣缸運動的時候，試管在試管夾上晃動，導致試管傾斜，不垂直，決定打開前面板調整混勻組件位置，向機器內部整體移動，經過了多次調整移動，一次移動一點，調試觀察，做血樣觀察，最后，觀察放置試管時，試管與試管架孔位沒有擦碰，放置位置在試管架孔位中心，做血樣，認為機器狀態正常，良好，恢復機器后觀察。

3.數據管理軟件聯機故障

故障現象：連接上機器后，機器端無報警，連接管理程序提示機器已連接，但是機器做完的數據無法傳到數據管理軟件端，從連接管理程序查看也沒有數據傳過來。

故障分析、處理過程：軟件在剛開始時正常，只不過因為反復備份數據，D 盤空間不足，刪除多余的AUTOBACKUP 文件，重新安裝軟件后，端口設置為5500；IP 設置為192.168.0.1，發現協議設置的是HL7，但是協議應該設置為15ID，問題出在協議設置上，將協議設置為15ID 后，一切正常。

4.儀器保養

每個工作結束后關機，通過吸入清洗液，儀器自動進行排空和清洗工作在連續使用的情況下，至少需每24h進行一次關機動作， 保持儀器管路的清潔。去除貯存池的液體、清洗手動進樣清洗杯、清洗樣品旋轉閥槽、清洗進樣槽，去除WBC 凝塊，對WBC 檢測孔進行清洗，清除流動室氣泡及對學檢測部件的流動室的清洗等。[2]分析儀每運行一個月左右，需要清洗開放采樣部件，自動采樣部件，并請執行探頭清潔液維護，需用探頭清潔液清洗分血閥、流動室、RBC池等組件或清洗整機；當分析儀每運行兩個月左右，請手工清洗分血閥。

BC5800全自動血液分析儀外形美觀流暢，視覺效果較好；全中文工作界面，異常信息提示明確，解決方法一目了然；該儀器適應大中小醫院檢驗部門的需要，是一款較理想的全自動五分類血液分析儀。[3]

參考文獻：

篇10

1 資料與方法

1.1 一般資料 研究抽取我院2013年4月份收治的1例男性支原體肺炎患者作為研究對象，年齡33歲，經血常規檢查顯示紅細胞及其相關參數存在異常，后經血涂片鏡檢，確認該患者存在紅細胞凝集。

1.2 儀器及試劑 選用日本光電公司生產的MEK-7222K全自動血細胞分析儀及其配套試劑。

1.3 方法 在患者肘部采集約2mL靜脈血，并置入EDTA-K2真空抗凝管內抗凝，37℃水浴期間檢驗20次，前后各10次；主要對HB、PLT、WBC、RBC、HCT、MCV，以及MCH和MCHC等幾種參數進行檢驗。

1.4 統計學分析 研究應用SPSS16.0統計軟件對數據進行分析和統計，計量材料采用（χ ±s）形式顯示，組間對比應用t檢驗，以P

2 結 果

經研究發現，水浴前后的HB、PLT和WBC檢驗結果比較，差異不具備統計學意義（P>0.05）；而RBC、HCT、MCV、MCH和MCHC等水浴前后的檢驗結果比較，差異則存在統計學意義（P

3 討 論

紅細胞冷凝集綜合征屬于較為常見的一類自身免疫性病癥，在血液溫度下降到一定程度時，血液循環當中的自身抗體IgM、IgG及IgA等便能夠與紅細胞抗原進行結合，導致該疾病出現[2]。據有關資料顯示，溫度的高低會影響到紅細胞形成血凝塊的速度，這種現象在30℃以下溫度時尤為明顯，而當溫度提高后，凝集消失[3]。在37℃水浴時，紅細胞可通過改變溫度來實現自動解聚或凝集，具有可逆性。在機體患病后，存在于人體血清中的冷凝集素便會在低溫下與紅細胞進行凝集，給血細胞分析儀的檢驗結果造成影響。在本組研究中，發現水浴前后的HB、PLT和WBC檢驗結果比較，差異不具備統計學意義（P>0.05）；而RBC、HCT、MCV、MCH和MCHC等水浴前后的檢驗結果比較，差異則存在統計學意義（P

經本研究表明，紅細胞冷凝集會給全自動血細胞分析儀的檢驗結果帶來相當程度的影響，臨床需要予以足夠重視，以提高檢測結果的準確性。

參考文獻

篇11

實驗室環境溫度決定了儀器、試劑以及標本的溫度,計數時稀釋液的溫度應為( 22±4) ℃ 。當稀釋液的溫度低時,紅細胞溶解后的膜碎片聚集, 粒度分布曲線的平坦段變短,當試劑溫度低于18 ℃時需加熱使用。有些溶血劑在低溫時可出現結晶, 并不容易被察覺,很難引起操作者的注意,但在顯微鏡下, 可見到其中懸浮著許多細小的結晶,這樣的溶血劑滴入血液中,白細胞計數必然增高。我們基層醫院地處北方，這種情況在實際操作中時有發生,尤其是在冬季。血細胞分析儀分析不出稀釋液在低溫時產生的聚合結晶，常使分析結果出現異常。在臨床中可以將溶血劑或稀釋液進行加熱，以升高溫度, 消除結晶。還可加入適量的非離子表面活性劑,從而減輕溶血劑結晶的發生。低溫也易激活血小板,引起血小板凝集, 造成血小板計數假性降低。

2 抗凝劑的影響

ABX60血液細胞分析儀檢測EDTA-K2 含量不同的靜脈血,臨床結果表明EDTA-K2 有效抗凝劑量在1.5~ 6. 0mg/ mL時,不影響分析結果。自制抗凝瓶EDTA-K2 用量1.5~ 2.2mg/ mL為宜。低于1. 5mg/mL時抗凝效果欠佳, 出現肉眼不易發現的凝集,可表現為血小板降低。在采血時，一般2mL的采血量,其誤差在± 0. 5mL范圍內的話比較適宜。血量過多或過少都會對結果造成影響,血量過多抗凝不充分,會出現凝塊;血量過少, 會導致抗凝劑過濃。筆者分析認為，由于血細胞遇抗凝劑先有一個短暫的(1~ 2min) 收縮過程, 這是因為鉀離子進入血漿以后,改變了滲透壓,導致水從細胞內流出所致。隨后細胞將鉀離子泵進膜內,細胞又恢復原態。絕大部分患者的標本這一時間只需要幾分鐘, 但也有人需要20~ 30 min。抗凝劑過濃會延長這個平衡時間。

3 標本放置時間的影響

筆者通過觀察總結，發現標本存放3~ 6 h對多數血液分析參數均有不同程度的影響, 主要影響WBC和PLT 結果。但有部分標本在放置的8h內大部分參數沒有顯著改變， 而平均血小板體積、血小板分布寬度、大血小板比率和血小板壓積在2h內卻有明顯增高。筆者認為，標本放置時間過長會導致細胞分層, 分層的細胞會產生不同的代謝物,形成微環境,此時, 細胞的體積與其周圍的微環境相適應, 重新混勻后需重新建立平衡, 最初的1~ 2min收縮,達到平衡約需30min。這一現象對血脂較高的標本影響更為顯著。

測定時間對血小板的影響更為顯著,在一定的時間段內, 隨著時間的延長, 抗凝劑與血液充分溶融, 松散聚集的血小板逐步解聚,血小板數值逐步升高。實際操作中, 由于急需報告結果(尤其是急診標本) 而使待測時間縮短, 往往導致血小板計數結果偏低。

4 生理和病理因素的干擾

在臨床實踐中,筆者有時會發現應用血細胞儀對新生兒血液進行分析時,使用正常量溶血劑計數白細胞, 各項結果與實際有差異。筆者認為, 由于新生兒處于特殊的生理缺氧狀態,其紅細胞數和血紅蛋白都高( Hb> 200g/ L)。常規溶血劑用量不能將紅細胞完全破壞, 加大溶血劑用量, 可以使白細胞正確分類, 計數準確。因此, 在新生兒血液分析中掌握好溶血劑用量是獲得可靠結果的關鍵。

病理因素也可影響血液分析的結果, 在某些疾病的影響下,當平均紅細胞體積小于70fL時,血小板計數假性升高, 這時需用顯微鏡人工計數才能得到準確的結果。

篇12

結論：網織紅細胞及其參數的變化可以更敏感的反應骨髓的造血功能，可作為化療患者監測骨髓功能的重要指標。

關鍵詞：化療網織紅細胞骨髓抑制

【中圖分類號】R4【文獻標識碼】A【文章編號】1008-1879（2012）12-0022-02

腫瘤患者在接受大劑量的化療藥物治療后，骨髓功能的抑制，可導致白細胞、血小板、紅細胞生成減少，導致感染、出血和貧血。過去一直將白細胞、血小板計數作為反應化療患者骨髓功能的觀察指標，但由于這些指標容易受到機體感染、其他治療的影響，有時結果不能準確反應骨髓造血功能是實際情況。網織紅細胞是介于成熟紅細胞和晚幼紅細胞的中間狀態，略大于成熟紅細胞，細胞胞漿內尚含有一定的嗜堿性RNA，經堿性染料（天青B、煌焦油藍、新亞甲藍）活體染色后，在胞漿內可看到藍色的點狀或網格狀的結構。

網織紅細胞計數過去常作為某些貧血的篩選指標，隨著血細胞分析儀、流式細胞術定量分析等自動化分析儀器的發展，為網織紅細胞計數提供了更先進的檢測手段和更多的參數。其中網織紅細胞百分比（RET）、中熒光強度網織紅細胞百分比率（MFR）、高熒光強度網織紅細胞百分比率（HFR）等參數，被認為能夠反應骨髓造血活性，且其敏感性高于白細胞、粒細胞和血小板計數，并不受感染、治療的影響[1-3]。本文對50例化療患者不同時期的網織紅細胞、各種血細胞計數等參數進行檢測分析，以探討網織紅細胞計數等參數判斷化療患者骨髓功能的臨床意義。

1材料與方法

1.1一般資料。本組資料來源于2011年1月至2011年12月間我院收治的50例各類惡性腫瘤化療患者。其中男性31例，女性19例；年齡15-69歲，平均（42.8±17.6）歲。患者的惡性腫瘤診斷均經過病理組織學或細胞學檢查確診，包括肺癌16例，胃癌6例，食管癌5例，卵巢癌3例，乳腺癌8例，宮頸癌7例，非霍奇金淋巴瘤5例。50例患者均進行藥物化療，化療方案采用CAP、NP、TP、GP、FAC、CHOP、ABVD等。

1.2實驗材料。日本東亞Sysmex公司XE-2100全自動血細胞分析儀，原裝進口配套試劑，高、中、低3種濃度的標準全血細胞質控品，EDTA-K2抗凝管。

1.3研究方法。每位患者均在嚴格無菌操作下采集外周末梢血，EDTA-K2抗凝，專用真空管保存，Sysmex XE-2100全自動血細胞分析儀檢測，于2小時內完成測定。檢測內容包括網織紅細胞百分比（RET）、中熒光強度網織紅細胞百分比率（MFR）、高熒光強度網織紅細胞百分比率（HFR），WBC。標本的采集開始于化療前空腹1次，化療開始后第3、7、10、14、21天，檢測上述指標。WBC的參考范圍4.0～10.0×109/L，網織紅細胞0.5%～1.5%，MFR、HFR分別為7.16%～15.44%、0.87%～4.33%。

1.4資料的統計。患者均建立統一的就診病歷，項目齊全，數據真實可靠。對患者的病例資料進行的觀察，并按試驗設計的要求，制定患者指標的觀察量表，其中包括：患者的姓名、性別、年齡、臨床診斷、化療方案、WBC、RET、MFR、HFR等項目，以上內容由經過專業化培訓的人員進行記錄、統計與分析。

1.5統計學處理。所用結果均采用SPSS16.0軟件進行統計學分析，均數采用t檢驗，率采用X2檢驗分析，當結果P

2結果

2.1患者化療前后各時段不同參數間的比較。化療后患者的骨髓造血功能明顯受到抑制，WBC、RET、MFR、HFR于化療后第3天開始降低，到化療后第10天，RET、MFR、HFR降至最低，差異有統計學意義（P0.05）。骨髓造血功能恢復時，MFR、HFR的升高早于WBC、RET，見表1。

2.2患者化療后最終發生IV骨髓抑制的比較。骨髓抑制的分級按世界衛生組織抗癌藥物急性及亞急性毒性反應分度標準。WBC：0°≥4.0×109/L，Ⅰ°3.0～3.9×109/L，Ⅱ°2.0～2.9×109/L，Ⅲ°1.0～1.9×109/L，Ⅳ°

注：RET（%）>0.3的化療患者發生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制的概率與RET（%）≤0.3的化療患者發生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制的概率相比較，差異有統計學意義（P

3結論

化療是治療惡性腫瘤的常用方法，大劑量的化療藥物在快速殺死腫瘤細胞或抑制腫瘤細胞生長的同時對機體內正常組織，尤其是增殖旺盛的細胞也具有殺滅或抑制作用。絕大部分的化療藥物對骨髓有不同程度的抑制作用，骨髓的造血功能受抑制后，可導致外周血粒細胞、淋巴細胞、血小板、血紅蛋白減少，導致機體免疫力、凝血功能降低，增加了各種病原感染、出血的機會。骨髓各種造血細胞的減少，其速度的快慢與細胞的半衰期密切相關。白細胞、血小板計數由于方法簡便、快速，過去一直作為反應化療患者骨髓功能的觀察指標，但由于這些指標容易受到機體感染、其他治療的影響，有時結果不能準確反應骨髓造血功能是實際情況。

網織紅細胞是介于成熟紅細胞和晚幼紅細胞的中間狀態，能夠反映紅細胞的成熟情況，也是判斷骨髓的紅細胞造血功能。隨著血細胞分析儀、流式細胞術定量分析等自動化分析儀器的發展，為網織紅細胞計數提供了更先進的檢測手段和更多的參數。RET、MFR、HFR等網織紅細胞參數，被認為能夠反應骨髓造血活性，且其敏感性高于白細胞、粒細胞和血小板計數，并不受感染、治療的影響。

本研究中化療后患者的骨髓造血功能明顯受到抑制，WBC、RET、MFR、HFR于化療后第3天就開始逐步下降，差異有統計學意義（P

化療藥物導致的骨髓抑制目前尚無有效的預防和治療方法，出現Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制時，患者容易發生感染、出血等并發癥，必須進行干預治療。找到一種敏感而可靠的指標，及時反應骨髓的功能變化，指導臨床合理用藥，減少各類并發癥的發生，具有重要的臨床價值。本研究中患者化療后第10天RET降到最低水平，RET>0.3的化療患者發生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制概率為18.8%，RET≤0.3的化療患者發生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制概率為77.8%，RET>0.3的患者發生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制的概率遠低于RET≤0.3的化療患者（P

綜上，腫瘤患者在化療期間，聯合檢測RET、MFR、HFR等網織紅細胞參數在評價骨髓造血功能時更敏感，更直觀，對預測Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制要一定的價值，指導臨床評價化療藥物的骨髓抑制作用，方便醫師及時的調整用藥方案。其檢查方法簡便、快速，結果可靠，具有良好的推廣價值。

參考文獻

篇13

關鍵詞 血細胞分析儀；血標本保存條件；檢測準確性

血細胞分析儀的廣泛應用為提高檢測結果的準確性、治療方法的針對性和合理性發揮了積極的推動作用。但在實際工作中，難免會出現血液標本無法及時送檢的情況，若保存不當，勢必會對檢測結果的準確性產生負面影響。為此，本次研究圍繞不同保存條件對血細胞分析儀檢測結果的影響展開分析和討論，現將研究過程報告如下。

1 材料與方法

1.1 儀器與試劑

采用日本Sysmex 公司的SF-3000 全自動血細胞分析儀及配套試劑，儀器在試驗前已經過校準。

1.2 方法

1.2.1 標本采集

抽取健康志愿者的靜脈血30ml，將其注入含有50mg EDTA-2K 的燒瓶（已硅化）混勻抗凝，即刻上機。按1ml/ 支的規格將血液分別置入27 支試管并加塞蓋緊，隨后平均分為3 組，分別置于4℃、20℃、30℃的條件下保存。在采血后的1、2、4、6、8、12、24、48、72h 這9 個時間點，分別從三組中取出一支試管進行血細胞分析。

1.2.2 分析方法

設備預熱30min 后即開始測定（保存條件為4℃的標本取出后需在室溫下平衡10min），每支標本進行兩次平行測定，取各參數均值打印并進行分析。每日使用質控物對儀器進行檢測，以確保血標本檢測結果的準確性不會受到來自儀器因素的影響。

1.3 評價標準

依據儀器對標本檢測的精密度，以標本在室溫（20℃）條件下放置1h 時的測定結果作為基準，將其余時間點的測定結果與基準值進行比較。以白細胞參數變化率>3%、紅細胞參數變化率>2%、血小板參數變化率>5% 為有意義。

2 結果

2.1 白細胞參數變化情況

白細胞計數（ 下簡稱WBC） 在48h（4℃）、24h（20℃）、8h（30℃）的測定值以及白細胞分類在12h（4 ℃）、8h（20℃）、4h（30℃）的測定值基本穩定，參數變化率<3%。其余各時間點3 組血標本的WBC 水平均表現出下降趨勢，在20℃、30℃的變化更點圖上，各細胞群的散點開始分散，散間分區混亂，報警增多。

淋巴細胞、單核細胞比例表現出上升趨勢，中性粒細胞比例表現出下降趨勢。

2.2 紅細胞參數變化情況

除始終處于穩定狀態的血紅蛋白（下簡稱HGB）外，其余參數均受到來自溫度因素的影響。保存條件為4℃的血標本，紅細胞值（下簡稱RBC）、紅細胞平均體積（下簡稱MCV）、紅細胞比容（下簡稱HCT）在48h 內的測定值基本穩定，變化率<2%。48h 后，MCV 與HCT 的測定值表現出輕微的上升趨勢。保存條件為20℃的血標本，RBC（48h 內）、MCV、HCT（12h內）的測定值基本穩定，變化率<2%。保存條件為30℃的血標本，RBC（24h 內）、MCV、HCT（8h 內）的測定值基本穩定，變化率2%。

MCV 在12h 后（20℃）、8h 后（30℃）的測定值呈現出迅速提升的趨勢，HCT 的測定值隨MCV 的升高而升高。在72h 時，RBC 在三種保存條件下的測定值均出現不同程度的下降，其中，30℃條件下的下降幅度最大，究其原因，可能與MCV 明顯升高、紅細胞膜發生破裂有關。

2.3 血小板參數變化情況

血小板值（ 下簡稱PLT） 在48h 內（4℃）、24h 內（20℃）、12h 內（30℃）的測定值基本穩定，血小板平均體積（下簡稱MPV）在4℃（8h 內）、20℃（6h 內）、30℃（4h 內）的測定值基本穩定，變化率<5%。其余各時間點3 組血標本的PLT 水平均表現出上升趨勢，尤以20℃、30℃條件下的表現最為突出。與此同時，MPV 也呈現出快速上升的趨勢，在24h 時間點，4℃條件下的變化率為14.1%、20℃條件下的變化率為25.7%、30℃條件下的變化率為34.6%。

3 討論

本次研究的結果顯示，在應用血細胞分析儀的過程中，所使用的抗凝血標本最佳保存溫度為4℃。若于室溫條件（20℃）下保存，應于8h 內完成血標本的檢測操作。若環境溫度≥ 30℃，應于4h 內完成血標本的檢測操作。即在日常工作中，若由于某些原因限制而不能立即完成血標本的送檢，應盡可能將標本放置在4℃的溫度環境下保存，如果條件不允許，則應將其放置在20℃的溫度環境（有空調的室溫條件）下保存，以免對血細胞分析儀檢測結果的準確性產生負面影響。

需要注意的一點是，不同廠商生產的血細胞分析儀對于WBC的檢測原理不同，因此在實際操作的過程中，應針對所采用的分析儀類型對最佳保存條件進行確認，切忌生搬硬套。